摘要:黄翅大白蚁是广泛分布于中国南部的一种主要高等培菌白蚁。本文介绍以几丁质为碳源从黄翅大白蚁后肠分离获得几丁质降解菌株的方法。
关键词: 培菌白蚁, 黄翅大白蚁, 肠道微生物, 几丁质降解
背景
白蚁肠道中存在多种共生微生物,包括细菌、真菌和原生动物如鞭毛虫,根据白蚁后肠有无鞭毛虫,可将白蚁分为低等白蚁 (有) 和高等白蚁 (无) 两大类 (Ni et al., 2013)。高等白蚁根据食性又分为食木/草白蚁、食土/腐殖质白蚁和培菌白蚁。培菌白蚁属于白蚁科大白蚁亚科,其在蚁巢中专一培养真菌鸡枞菌(Termitomyces) (Aanen et al.,2009),两者存在共生互惠关系。白蚁取食鸡枞菌的无性孢子—小白球菌(Termitosphaeria duthiei (Berk.) Ciferri.),获得必需的氮源,而小白球菌在白蚁肠道与木质颗粒混合,经过消化后被排泄到体外形成新的菌圃 (Poulsen,2015)。真菌细胞壁主要由几丁质、葡聚糖和蛋白质组成,因此几丁质代谢是培菌白蚁营养利用以及抑制菌圃上其它杂菌生长的关键环节。通过分离培养能够降解几丁质的肠道微生物,为进一步研究培菌白蚁消化利用真菌和抵御杂菌在菌圃的生长奠定基础。
材料与试剂
- 琼脂 (生工生物工程有限公司,产品目录号:A505255)
- 酵母粉 (Oxoid, England, 产品目录号:LP0021)
- 胰蛋白胨 (生工生物工程有限公司,上海,产品目录号:A505247)
- 无机盐 (NaCl,KCl,Na2HPO4,NaH2PO4,KNO3,K2HPO4·3H2O,MgSO4·7H2O,FeSO4·7H2O,K2HPO4,MgSO4,(NH4)2SO4,CaCO3,MnCl2·4H2O, ZnSO4·7H2O) (国药集团化学试剂有限公司,上海,分析纯)
- 几丁质 (Sigma公司,美国,产品目录号:C7170)
- 盐酸 (国药集团化学试剂有限公司,上海,分析纯)
- 乙醇 (国药集团化学试剂有限公司,上海,分析纯)
- 引物合成及PCR产物测序由北京六合华大基因科技股份有限公司完成
- 16S rRNA通用引物: 27F (5’-AGAGTTTGATCMTGGCTCAG-3’),1492R (5’-TACGGYTACCTTGTTACGACTT-3’)
- 基因组提取试剂盒 (Bacterial DNA Kit 500,D3350-01,Omega Bio-Tek公司)
- DNA纯化试剂盒 (Gel Extraction Kit 200,D2500-02,Omega Bio-Tek公司)
- PBS 缓冲液 (见溶液配方)
- 胶体几丁质 (见溶液配方)
- 几丁质培养基 (见溶液配方)
- LB 培养基 (见溶液配方)
仪器设备
- 超净工作台 (品牌AIRTCH,型号:SW-CJ-2FD)
- 分析天平 (赛多利斯公司,北京,型号:ALC-110.4&1100.2)
- 高压灭菌器 (申安医疗器械厂,上海,型号:LDZM-80L)
- 恒温培养箱 (精宏实验设备公司,上海,型号:DNP-9052)
- 恒温摇床 (知楚仪器公司,上海,型号:ZQZY-BF8)
- PCR 仪 (品牌TaKaRa,型号:TP600)
- 电泳仪 (六一电泳器材厂公司,北京,型号:DYY-10C)
- 恒温金属浴 (博日科技公司,杭州,型号:CHB-100)
- 凝胶成像仪 (品牌UVItec,型号:97-0094-16)
- 离心机 (品牌Eppendorf,型号:Centrifuge 5417)
- 厌氧袋 (品牌MITSUBISHI GAS CHEMICAL COMPANY, INC,型号:C-43)
软件和数据库
- 利用细菌16S rRNA序列进行菌种鉴定的网站
- 各国菌种保藏中心网址(可参考各种培养基的配制方法,并且每种微生物都有其对应的培养基)
- MAGE7.0 软件 下载地址MEGA7.0.26_win64_setup.exe
实验步骤
一、白蚁肠道几丁质降解菌的分离与纯化
- 本实验所涉及白蚁材料为黄翅大白蚁,采自湖南省耒阳县木兰村 (112°967262″E, 26°609833″N)。白蚁后肠样品准备参照蒋宇彤等 (2021)的方法。
- 取各个梯度PBS稀释液 (10-1、10-2、10-3、10-4 和10-5) 200 μl分别涂布于几丁质培养基平板上,在有氧和厌氧两种条件下30 °C培养5 d。厌氧条件是将平板放置于厌氧袋中进行培养。
- 将产生水解圈的单菌落接种至新的几丁质培养基平板,在几丁质培养基平板上进行多次划线培养,直到获得纯菌株。
二、白蚁肠道分离菌株的序列分析
- 用已灭菌的牙签挑取纯化的菌体接入15 ml LB液体培养基中,30 °C培养2 d后,在4°C条件下12,000 × g离心 1 min收集菌体。
- 利用基因组试剂盒提取菌株的基因组DNA,用分光光度计检测DNA纯度,用琼脂糖电泳法检测DNA浓度。
- 利用细菌通用引物27F 和1492R 扩增16S rRNA基因片段,PCR 扩增体系为:细菌基因组DNA (50-200 ng/μl) 1 μl,27F引物1 μl,1492R引物 1 μl,引物浓度为10 μM,dNTPs 4 μl,10× Buffer 5 μl, EasyTaq 1 μl,ddH2O 37 μl。PCR扩增条件为:95°C预变性5 min;95°C 30 s,58°C 45 s,72°C 2 min,30个循环;72°C延伸10 min。
- 将获得的PCR产物进行琼脂糖 (1%) 凝胶电泳。
- 切胶回收扩增获得的1,500 bp片段,用DNA纯化试剂盒进行纯化(按试剂盒要求进行)。
- 将回收的PCR片段送上海生工测序。
- 测序结果在NCBI系统中进行Blast比对,下载相似性最高的相关细菌菌株序列,利用MAGE7.0 软件邻位法构建系统发育树,确定分离菌株的分类地位。
结果与分析
一、分离到8株几丁质降解菌
稀释10-3倍数的后肠组织样品在几丁质培养基平板上,长出50个左右的菌落。筛选几丁质降解圈大的菌落,多次在几丁质培养基上划线纯化,最后获得纯培养菌株。纯菌株在几丁质培养基上培养5 d,若观察到明显的几丁质降解圈,表明筛选的纯菌株可产生几丁质酶。在有氧条件下分离到5个纯菌株,分别记为chi-1、chi-2、chi-3、chi-4和chi-5;在厌氧条件下分离到3个纯菌株,分别记为an-chi-1、an-chi-2和an-chi-3 (图1)。
图 1. 8株几丁质降解菌的培养特征
二、16S rRNA序列分析
纯化后的菌株,通过16SrRNA基因测序,然后对其序列进行比对分析,发现它们属于不同属的菌株。它们分别与Flavobacterium oceanosedimentum,Dactylosporan-gium salmoneum,Brevibacillus borstelensis,Sphingomonas koreensis,Paenibacillus odorifer,Cellulomonas flavigena,Stenotrophomonas panacihumi和Bacillus cereu 相似度最高,相似度均大于97% (表1)。其中黄杆菌属Flavobacterium、指孢囊菌属Dactylosporangium和纤维单胞菌属Cellulomonas属于放线菌菌门,鞘氨醇单胞菌属Sphingomonas和寡养单胞菌属Stenotrophomonas属于变形菌门,短芽孢杆菌属Brevibacillus、类芽孢杆菌属Paenibacillus和芽孢杆菌属Bacillus属于厚壁菌门 (图2)。
表1. 8 株几丁质降解菌16S rRNA 的序列在GenBank中的比对结果
图2. 分离纯化的8株几丁质降解菌基于16S rRNA基因序列构建的进化树
注意事项
- 胶体几丁质配制呈酸性会导致配制失败,因而需不断地用去离子水冲洗几丁质沉淀,将其洗至pH为中性7.0。
- 采集到的白蚁材料尽量在新鲜状态下立即解剖,以保证几丁质降解菌的分离效果。
- 在解剖白蚁前,清洗消毒白蚁体表,以防止体外杂菌的污染。
- 解剖过程中镊子夹住白蚁头部,用解剖针从尾部缓缓拉出肠道,以保持肠道的完整性。
溶液配方
- PBS 缓冲液
NaCl 4 g,KCl 0.1 g,Na2HPO4 0.72 g,NaH2PO4 0.12 g,加入灭菌去离子水至终体积为500 ml,用NaOH或HCl调节pH至7.4。 - 胶体几丁质
称取10 g几丁质粉末缓慢加入100 ml 盐酸中,4°C、150 r/min摇床振摇1 h,使几丁质完全溶解。放于4°C 冰箱中静置24 h,加入5倍体积的50% 乙醇 (体积比) 静置5 h,加蒸馏水定容至1 L,室温条件下10,000 rcf离心10 min,弃上清液,用去离子水将沉淀反复冲洗至pH为7.0,配置溶液终浓度为50 g/L,4°C冰箱保存备用。 - 固体几丁质培养基
胶体几丁质200 ml,FeSO4·7H2O 0.01g,MgSO4·5H2O 0.5 g,胰蛋白胨1 g,ZnSO4 0.01 g,KH2PO4 0.3 g,MnCl2 0.01 g,K2HPO4 0.7g,琼脂18 g,加蒸馏水定容至1 L。121°C,高压蒸汽灭菌20 min。 - LB液体培养基
NaCl 10 g,胰蛋白胨10 g,酵母提取物5 g,琼脂15 g,加蒸馏水定容至1 L。
121°C,高压蒸汽灭菌20 min。
致谢
本项目获得国家重点基础研究发展计划 (973计划, 编号:2011CB707402),国家自然科学基金 (编号:31970119, 31272370, 30870085) 及山东大学微生物技术国家重点实验室自主设置课题的支持。依据本实验方案我们从培菌白蚁肠道中分离到几丁质降解菌,并发现鉴定到一个新菌种 (孙新新等,2017; Sun et al.,2018)。
参考文献
- Aanen, D. K., de Fine Licht, H. H., Debets, A. J., Kerstes, N. A., Hoekstra, R. F. and Boomsma, J. J. (2009). High symbiont relatedness stabilizes mutualistic cooperation in fungus-growing termites. Science 326(5956): 1103-1106.
- Ni, J. and Tokuda, G. (2013). Lignocellulose-degrading enzymes from termites and their symbiotic microbiota. Biotechnol Adv 31(6): 838-850.
- Poulsen, M. (2015). Towards an integrated understanding of the consequences of fungus domestication on the fungus-growing termite gut microbiota. Environ Microbiol 17(8): 2562-2572.
- Sun, X., Li, J., Du, J., Xiao, H. and Ni, J. (2018). Cellulomonas macrotermitis sp. nov., a chitinolytic and cellulolytic bacterium isolated from the hindgut of a fungus-growing termite. Antonie Van Leeuwenhoek 111(3): 471-478.
- 孙新新, 李净净, 宁娜, 谭慧军 and 倪金凤 (2017). 黄翅大白蚁后肠几丁质降解微生物的分离与鉴定. 微生物学通报 44 (7): 1649-1654
- 蒋宇彤,林子佳,李净净,倪金凤. (2021). 白蚁肠道微生物样品收集与制备. Bio-101 e2003677.
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Q&A
Copyright: © 2021 The Authors; exclusive licensee Bio-protocol LLC.
引用格式:张硕, 蒋宇彤, 孙新新, 倪金凤. (2021). 黄翅大白蚁后肠几丁质降解微生物的分离与培养. // 微生物组实验手册.
Bio-101: e2003674. DOI:
10.21769/BioProtoc.2003674.
How to cite: Zhang, S., Jiang, Y. T., Sun, X. X. and Ni, J. F. (2021). Isolation and Cultivation of Chitin-degrading Microorganisms from the Hindgut of
Macrotermes barneyi. // Microbiome Protocols eBook.
Bio-101: e2003674. DOI:
10.21769/BioProtoc.2003674.